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水稻OmR40cl蛋白的表达纯化及其与血红细胞的凝集作用

2016-05-24 15:02:37 安装信息网

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陈贤1,2,邓志平2,董岩3,严成其2,陈剑平1,2

1.浙江大学农业与生物技术学院,浙江杭州310029;2.浙江省农业科学院病毒与生物技术研究所,浙江杭州310021;3.南京农业大学植物保护学院,江苏南京210095

[摘要]  目的:在大肠杆菌中融合表达水稻蛋白OmR40cl,并探讨其与红细胞的凝集效果,为进一步研究OmR40cl在体外的抑菌实验做准备。方法:PCR扩增目的基因,经BamH I及NotI双酶切,连入表达载体pCEX-6p-1构建成重组质粒,测序正确后转入大肠杆菌BL21,优化诱导表达条件;纯化重组OmR40cl蛋白,并分析其与红细胞的凝集效果。结果:获得原核表达的OmR40cl蛋白,重组OmR40cl在低温(4qC)条件下可与兔血红细胞发生凝集作用。结论:原核表达体系适合水稻OmR40cl蛋白的融合表达。

[关键词]  水稻凝集素;OmR40cl;原核表达;凝集效果

[中图分类号]  Q78; R392.1[文章编号]  1009-0002( 2016) 02-0168-05

 凝集素是一类对红细胞具有凝集活性的蛋白或糖蛋白的总称,广泛分布于动物、植物和微生物中。自1884年Stillmark首次发现蓖麻凝集素以来…,已有多达1000多种植物凝集素被发现。植物凝集素是一类防御蛋白,在抗虫、抗真菌、抗细菌等方面扮演着非常重要的角色。转GNA(Galanthus n,ivalisagglutinin,雪莲花凝集素)阳和PTA(Pinellia ternataagglutinin,半夏凝集素)的水稻分别对白背飞虱和褐飞虱具有明显的毒杀作用;稻瘟菌抗病基因Pi~d2编码的蛋白是一个凝集素受体激酶;狗脊蕨凝集素分别对金黄色葡萄球菌、玉米大斑病菌、甘薯薯瘟病菌等具有很强的抑制作用。

 水稻中有125个凝集素基因和174个凝集素受体激酶基因。水稻凝集素在水稻胚胎发育、植株发育及抗病…I过程中可能扮演着非常重要的作用。目前,有关水稻凝集在水稻防御病原细菌中的研究报道较少。前期,我们通过2D DIGE-MS(荧光双向电泳一质谱技术)发现一个响应白叶枯病菌侵染的疣粒野生稻凝集素蛋白OmR40cl,与Ricin_B同源。在本研究中,我们将谷胱甘肽S转移酶( glutathi-one S-transferase,GST)与OmR40cl蛋白融合表达,利用GST层析法快速分离纯化OmR40cl-GST蛋白,通过体外红细胞凝集实验,验证OmR40cl是否具有凝集作用,为下一步研究OmR40cl的体外抑菌实验和有关OmR40cl是否参与水稻识别白叶枯病菌的侵染前期做准备。

1  材料与方法

1.1  材料

 原核表达菌株大肠杆菌BL21购自北京全式金生物科技有限公司;大肠杆菌DH5a由本实验室保存;原核表达载体pGEX-6p-l、填料和预装柱购自GE Healthcare Life Science公司;克隆载体pMD19-T Blunt Simple购自TaKaRa公司;高保真聚合酶KOD- FX购自TOYOBO公司;限制性内切酶购自NEB公司;T4DNA连接酶购自TaKaRa公司;胶回收和质粒提取试剂盒购自康为世纪公司;SDS-PAGE所用化学试剂购白Amresco公司;蛋白分子量mark-er购自Fermentas公司;GST单克隆抗体购自Abmart公司;碱性磷酸酶标记二抗购自Sigma公司;PVDF购自Bio-Rad公司;半干转移槽购自Bio-Rad公司。

1.2  0mR40cl-GST融合表达载体的构建

 根据RGAP(Rice Genome Annotation Project,http://rice.plantbiology.msu.edu/index.shtml)中公布的R40cl( Os03921040.2)的核苷酸序列,设计带有酶切位点的基因全长引物F-5 7(BamH I)GGATCCATGTTCGGCTTCGGGCACCAC3'和R-5 7(NotI)GCGGCCGCTTACCAGGGGACGATCTTCCA3,。  以本实验保存的pjET-OmR40cl为模板,在KOD-FX高保真聚合酶作用下进行PCR扩增(PCR反应流程:940C预变性2 min;94℃变性30 s,58℃退火30 s,68℃延伸90 s,共35个循环;68℃延伸8 min)。PCR产物经

1.5%琼脂糖凝胶电泳后回收并纯化得到OmR40cl片段,将其连接到pMD19-Tsb载体中,转化大肠杆菌DH5a,经菌液PCR检测为阳性后送博尚生物测序公司进行序列检测。

 将测序正确的pMD19- Tsb- R40cl和载体pGEX-6p-l分别用限制性内切酶Bam H I和Not I

酶切,经琼脂糖凝胶电泳,切胶纯化回收,将回收片段和载体混合后,在T4DNA连接酶作用下于16℃反应3h,将连接产物导人大肠杆菌DH5a,菌液PCR检测阳性后测序,将测序正确的OmR40cl-GST质粒导人大肠杆菌BL21,菌液PCR检测为阳性的菌株作为下一步表达菌株。

1.3  融合蛋白的诱导表达

 挑取带有OmR40cl-GST的BL21单克隆于装有LB液体培养基(含100 μg/m L氨苄西林)的1.5 m LEP管中,37℃振荡过夜培养,按1:100的比例将菌液转接到5 m L(共6组)新鲜LB培养基(含100 μg/m L氨苄西林)中,37℃振荡培养2h至D600nm值约为0.6,

从菌液中取出1mL作为阴性对照组,在余下的菌液中添加IPTG(终浓度分别为0.1、0.4、0.7 m mol/L),并分别于37℃、30℃振荡培养5 h;从菌液中取1 m L作为实验组,8000 r/min离心3 miri收集菌体,向菌体中添加100μL缓冲液(50 m mol/L Tris- ClpH6.8,100 m mol/L DTT,2% SDS,0.1%溴酚蓝,10%甘油)重悬菌体,然后在液氮中反复冻融3次,13 000 r/min离心10 min,转移上清液,再次用100μL缓冲液重悬沉淀,按比例向上清液和沉淀中添加

4×上样缓冲液,在沸水中孵育约10 min,13 000 r/min离心10 min,分别取10μL行12.5% SDS-PAGE及Western印迹。

1.4融合蛋白的纯化与鉴定

 按照1.3所述步骤大量诱导OmR40cl-GST蛋白表达,并用超声波细胞破碎仪破碎细胞,12 000 r/min离心20 min,转移上清液。在预装柱中纯化OmR40cl-GST蛋白:向预装柱的进料口缓慢注射8m L PBS缓冲液(140 m mol/L Na Cl,2.7 m mol/LKCl, 10 m mol/L NaZHP04, 1.8 m mol/L KH2P04,pH7.3),吸取50 m L上清液,在鲁尔接头作用下缓慢经过预装柱,接着吸取10 m L PBS缓冲液缓慢清洗柱子,用洗脱缓冲液(50 m mol/L Tris-HCl,还原型谷胱甘肽,pH8.0)将柱内的OmR40cl-GST洗脱下来。将OmR40cl-GST蛋白溶液转移至透析袋中,并浸润在PBS缓冲液中透析4h,最后利用PEG20000去除样品中的水分,进行12.5% SDS-PAGE检测。

1.5融合蛋白的红细胞凝集实验

 采取兔子静脉处血浆10 m L,缓慢注入带有1m L柠檬酸钠(3.8%)的50 m L无菌EP中,向管中加4 m L生理盐水,水平轻微混匀,1500 r/min离心5 min;重复生理盐水清洗血红细胞共计5次;利用红细胞压积制成2%的红细胞悬浮液,分别向96孔板(5组×12梯度)中60个孔中各添加25μL生理盐水,将OmR40cl-GST蛋白溶液(1 mg/m L)按1/2梯度稀释,从第1孔一直添加到第12孔,GST(I mg/m L)、PHA(phytohemagglutinin,植物凝血素)(1 mg/

m L)及PBS溶液的添加方式与OmR40cl-GST基本一样,然后向每组的12个梯度中分别添加25 μL红细胞悬浮液,水平晃动后分别置于37℃及4℃约15min,观察凝集效果,计算凝集效价。

2结果

2.1  0mR40cl-GST融合表达载体的构建

 提取目的基因测序正确的pMD19-Tsb- R40cl质粒,用BamH I和NotI双酶切,获得OmR40cl片段。pGEX-6p-l原核表达载体也经同样双酶切处理,获得线性载体。将载体和目的片段连接后导人大肠杆菌DH5a细胞(图1),获得OmR40c1-GST重组质粒。提取目的基因,将测序正确的OmR40cl-GST质粒导人大肠杆菌BL21原核表达细胞,挑取菌液进行阳性检测(图2)。

2.2 0mR40cl-GST融合蛋白的诱导表达

 温度和IPTG浓度是影响融合蛋白表达的两大关键因素。为了确定融合蛋白OmR40cl-GST的诱导条件,重组菌株分别在2个温度( 37℃、30℃)和3个IPTG浓度(0.1、0.4、0.7 m mol/L)条件下进行诱导表达。结果表明(图3),IPTG浓度为0.1 m mol/L时OmR40cl- GST蛋白表达量最高,IPTG浓度为0.7m mol/L时蛋白表达量最低;温度基本不影响OmR40cl-GST融合蛋白的表达。

2.3  0mR40cl-GST融合蛋白的Western印迹验证

 OmR40Cl-GST融合蛋白表达载体通过小量诱导表达实验后,确定诱导条件为0.1 m mol/L IPTG、37℃下诱导表达5h。将诱导前后的菌液裂解后,提取上清蛋白进行Western印迹,结果如图4,空载体pGEX-6p-l诱导表达的M r为28.43x103的蛋白能被GST单抗特异识别,且与理论M r一致,说明该蛋白即为GST标签蛋白;pGEX-6p-l-OmR40cl诱导表达的M r为69.71x103的蛋白也能被GST单抗特异识别,且与理论M r一致,说明该蛋白即为OmR40cl-GST

融合蛋白。

2.4 0mR40cl-GST融合蛋白的纯化

 OmR40cl-GST融合蛋白通过适宜条件诱导表达后,将重组菌经超声波破碎及离心,获得上清液,通过亲和层析分别获得OmR40cl- GST和GST蛋白。为了检测亲和层析的洗脱情况,分别吸取15μL的第1、2及3个2 m L洗脱液进行SDS-PAGE检测,结果如图5,OmR40cl-GST和GST均被纯化,且第1管洗脱液的蛋白浓度最高。

2.5  0mR40cl-GST融合蛋白与红细胞的凝集作用

 将OmR40cl-GST、GST、PHA(浓度均为1 mg/m L)及PBS缓冲液分别与兔红细胞反应,结果如图6。在4℃时只有OmOmR40cl-GST和阳性对照PHA与兔红细胞有凝集沉降作用,而在37℃时只有PHA与兔红细胞有凝集沉降作用。可以看出OmR40cl具备凝集红细胞的功能,是一种水稻凝集素,并且其凝集效价随着温度的降低而增强。

3讨论

 凝集素在植物生长发育、抗盐、抗真菌及抗虫等生命活动中扮演重要的角色。自1936

年Sumner分离纯化了第一个植物凝集素ConA(刀豆凝集素)以来,对植物凝集素的性质、分子结构及功能的研究取得了很大进展。

 本研究中,我们采用原核表达体系诱导表达OmR40cl-CJST融合蛋白。为了最大量获得具有生物活性、可溶性的OmR40cl-GST,我们优化了诱导温度和IPTG浓度,使得OmR40cl-GST融合蛋白大量表达于细胞裂解后的上清里。我们利用亲和层析纯化OmR40cl-GST融合蛋白,经过洗脱、透析后,最终获得了纯度较高、特异性较强的OmR40cl-GST融合蛋白。

 用标签GST蛋白和OmR40cl-GST融合蛋白对兔红细胞进行凝集素血凝试验,发现OmR40cl在4℃下具有凝集红细胞的特性,而在37℃时丧失凝集作用。OmR40cl的凝集效价为0.125 mg/m L对应2%兔红细胞。对OmR40cl凝集素的表达与纯化,为研究OmR40cl的体外抑菌实验,以及OmR40cl是否参与水稻识别白叶枯病菌的侵染奠定了基础。

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